我們都知道，ELISA可用于測定抗原，也可用于測定抗體。

在這種測定方法中有三個必要的試劑：
（1）固相的抗菌素原或抗體，即"免疫吸附劑"（immunosorbent）；
（2）酶標記的抗原或抗體，稱為"結合物"（conjugate）；
（3）酶反應的底物。根據試劑的來源和標本的情
況以及檢測的具體條件，可設計出各種不同類型的檢測方法。

用于檢驗的ELISA主要有以下幾種類型：

雙抗體夾心法測抗原
　　雙抗體夾心法是檢測抗原*常用的方法，操作步驟如下：
1） 將特異性抗體與固相載體聯(lián)結，形成固相抗體。洗滌除去未結合的抗體及雜質。
2） 加受檢標本，保溫反應。標本中的抗原與固相抗體結合，形成固相抗原抗體復合物。     
　　洗滌除去其他未結合物質。
3） 加酶標抗體，保溫反應。固相免疫復合物上的抗原與酶標抗體結合。徹底洗滌未結合
　　的酶標抗體。此時固相載體上帶有的酶量與標本中受檢抗原的量相關。
4） 加底物顯色。固相上的酶催化底物成為有色產物。通過比色，測知標本中抗原的量。
　　在臨床檢驗中，此法適用于檢驗各種蛋白質等大分子抗原，例如HBsAg、HBeAg、
AFP、hCG等。只要獲得針對受檢抗原的異性抗體，就可用于包被固相載體和制備酶結合
物而建立此法。如抗體的來源為抗血清，包被和酶標用的抗體*好分別取自不同種屬的動
物。如應用單克隆抗體，一般選擇兩個針對抗原上不同決定簇的單抗，分別用于包被固相
載體和制備酶結合物。這種雙位點夾心法具有很高的特異性，而且可以將受檢標本和酶標
抗體一起保溫反應，作一步檢測。
　　在一步法測定中，當標本中受檢抗原的含量很高時，過量抗原分別和固相抗體及酶標
抗體結合，而不再形成"夾心復合物"。類同于沉淀反應中抗原過剩的后帶現象，此時反應
后顯色的吸光值（位于抗原過剩帶上）與標準曲線（位于抗體過剩帶上）某一抗原濃度的
吸光值相同（參見1.3.2，圖1-4），如按常法測讀，所得結果將低于實際的含量，這種現
象被稱為鉤狀效應（hook effect），因為標準曲線到達高峰后呈鉤狀彎落。鉤狀效應嚴重
時，反應甚至可不顯色而出現假陰性結果。因此在使用一步法試劑測定標本中含量可異常
增高的物質（例如血清中HBsAg、AFP和尿液hCG等）時，應注意可測范圍的*高值。用
高親和力的單克隆抗體制備此類試劑可削弱鉤狀效應。
　　假使在被測分子的不同位點上含有多個相同的決定簇，例如HBsAg的a決定簇，也可
用針對此決定的同一單抗分別包被固相和制備酶結合物。但在HBsAg的檢測中應注意亞型
問題，HBsAg有adr、adw、ayr、ayw4個亞型，雖然每種亞型均有相同的a決定簇的反應
性，這也是用單抗作夾心法應注意的問題。
　　雙抗體夾心法測抗原的另一注意點是類風濕因子（RF）的干擾。RF是一種自身抗
體，多為IgM型，能和多種動物IgG的Fc段結合。用作雙抗體夾心法檢測的血清標本中如含
有RF，它可充當抗原成份，同時與固相抗體和酶標抗體結合，表現出假陽性反應。采用
F（ab'）或Fab片段作酶結合物的試劑，由于去除了Fc段，從而消除RF的干擾。雙抗體
夾心法ELISA試劑是否受RF的影響，已被列為這類試劑的一項考核指標（參見6.2）。
　　雙抗體夾心法適用于測定二價或二價以上的大分子抗原，但不適用于測定半抗原及小
分子單價抗原，因其不能形成兩位點夾心。

雙抗原夾心法測抗體
　　反應模式與雙抗體夾心法類似。用特異性抗原進行包被和制備酶結合物，以檢測相應
的抗體。與間接法測抗體的不同之處為以酶標抗原代替酶標抗抗體。此法中受檢標本不需
稀釋，可直接用于測定，因此其敏感度相對高于間接法。乙肝標志物中抗HBs的檢測常采
用本法。本法關鍵在于酶標抗原的制備，應根據抗原結構的不同，尋找合適的標記方法。
 間接法測抗體
　　間接法是檢測抗體常用的方法。其原理為利用酶標記的抗抗體（抗人免疫球蛋白抗
體）以檢測與固相抗原結合的受檢抗體，故稱為間接法（見圖2-3）。操作步驟如下：
1）將特異性抗原與固相載體聯(lián)結，形成固相抗原。洗滌除去未結合的抗原及雜質。
2）加稀釋的受檢血清，保溫反應。血清中的特異抗體與固相抗原結合，形成固相抗原抗
　　體復合物。經洗滌后，固相載體上只留下特異性抗體，血清中的其他成份在洗滌過程
　　中被洗去。
3）加酶標抗抗體�？捎妹笜丝谷薎g以檢測總抗體，但一般多用酶標抗人IgG檢測IgG抗
　　體。固相免疫復合物中的抗體與酶標抗體抗體結合，從而間接地標記上酶。洗滌后，
　　固相載體上的酶量與標本中受檢抗體的量正相關。
4）加底物顯色
　　本法主要用于對病原體抗體的檢測而進行傳染病的診斷。間接法的優(yōu)點是只要變換包
被抗原就可利用同一酶標抗抗體建立檢測相應抗體的方法。
　　間接法成功的關鍵在于抗原的純度。雖然有時用粗提抗原包被也能取得實際有效的結
果，但應盡可能予以純化，以提高試驗的特異性。特別應注意除去能與一般健康人血清發(fā)
生反應的雜質，例如以E.Coli為工程酶的重組抗原，如其中含有E.Coli成份，很可能與受過
E.Coli感染者血甭中的抗E.Coli抗體發(fā)生反應�？乖�中也不能含有與酶標抗人Ig反應的物
質，例如來自人血漿或人體組織的抗原，如不將其中的Ig去除，試驗中也發(fā)生假陽性反
應。另外如抗原中含有無關蛋白，也會因竟爭吸附而影響包被效果。
　　間接法中另一種干擾因素為正常血清中所含的高濃度的非特異性。病人血清中受檢的
特異性IgG只占總IgG中的一小部分。IgG的吸附性很強，非特異IgG可直接吸附到固相載體
上，有時也可吸附到包被抗原的表面。因此在間接法中，抗原包被后一般用無關蛋白質
（例如牛血清蛋白）再包被一次，以封閉（blocking）固相上的空余間隙。另外，在檢
測過程中標本須先行稀釋（1:40~1:200），以避免過高的陰性本底影響結果的判斷。

競爭法測抗體
　　當抗原材料中的干擾物質不易除去，或不易得到足夠的純化抗原時，可用此法檢測特
異性抗體。其原理為標本中的抗體和一定量的酶標抗體競爭與固相抗原結合。標本中抗體
量越多，結合在固相上的酶標抗體愈少，因此陽性反應呈色淺于陰性反應。如抗原為高純
度的，可直接包被固相。如抗原中會有干擾物質，直接包被不易成功，可采用捕獲包被
法，即先包被與固相抗原相應的抗體，然后加入抗原，形成固相抗原。洗滌除去抗原中的
雜質，然后再加標本和酶標抗體進行競爭結合反應。競爭法測抗體有多種模式，可將標本
和酶標抗體與固相抗原競爭結合，抗HBc 　　ELISA一般采用此法。另一種模式為將標本
與抗原一起加入到固相抗體中進行競爭結合，洗滌后再加入酶標抗體，與結合在固相上的
抗原反應�？笻Be的檢測一般采用此法。

 競爭法測抗原
　　小分子抗原或半抗原因缺乏可作夾心法的兩個以上的位點，因此不能用雙抗體夾心法
進行測定，可以采用競爭法模式。其原理是標本中的抗原和一定量的酶標抗原競爭與固相
抗體結合。標本中抗原量含量愈多，結合在固相上的酶標抗原愈少，*后的顯色也愈淺。
小分子激素、藥物等ELISA測定多用此法。

捕獲包被法測抗體
　　IgM抗體的檢測用于傳染病的早期診斷中。間接法ELISA一般僅適用于檢測總抗體或
IgG抗體。如用抗原包被的間接法直接測定IgM抗體，因標本中一般同時存在較高濃度的
IgG抗體，后者將競爭結合固相抗原而使一部份IgM抗體不能結合到固相上。因此如用抗人
IgM作為二抗，間接測定IgM抗體，必須先將標本用A蛋白或抗IgG抗體處理，以除去IgG的
干擾。在臨床檢驗中測定抗體IgM時多采用捕獲包被法。先用抗人IgM抗體包被固相，以捕
獲血清標本中的IgM（其中包括針對抗原的特異性IgM抗體和非特異性的IgM）。然后加入
抗原，此抗原僅與特異性IgM相結合。繼而加酶標記針對抗原的特異性抗體。再與底物作
用，呈色即與標本中的IgM成正相關。此法常用于病毒性感染的早期診斷。甲型肝炎病毒
（HAV）抗體的檢測模式見圖2-7。
　　類風濕因子（RF）同樣能干擾捕獲包被法測定IgM抗體，導致假陽性反應。因此中和
IgG的間接法近來頗受青睞，用這類試劑檢測抗CMV IgGM和抗弓形蟲IgM抗體已獲成功。

 ABS-ELISA法
　　ABS為親和素(avidin)生物素(biotin)系統(tǒng)(system)的略語。親和素是一種糖蛋白，分子
量60000，每個分子由4個能和生物素結合的亞基組成。生物素為小分子化合物，分子量
244。用化學方法制成的衍生物素-羥基琥珀酰亞胺酯可與蛋白質和糖等多種類型的大小分
子形成生物素標記產物，標記方法頗為簡便。生物素與親和素的結合具有很強的特異性，
其親和力較抗原抗體反應大得多，兩者一經結合就極為穩(wěn)定。由于一個親和素可與4個生
物素分子結合，因此如把ABS與ELISA法可分為酶標記親和素-生物素（LAB）法和橋聯(lián)親
和素-生物素（ABC）法兩種類型。兩者均以生物素標記的抗體（或抗原）代替原ELISA系
統(tǒng)中的酶標抗體（抗原）。在LAB中，固相生物素先與不標記的親和素反應，然后再加酶
標記的生物素以進一步提高敏感度。在早期，親和素從蛋清中提取，這種卵親和素為堿性
糖蛋白，與聚苯乙烯載體的吸附性很強，用于ELISA中可使本底增高。從鏈霉菌中提取的
鏈霉親和素則無此缺點，在ELISA應用中有替代前者的趨勢。由于ABS-ELISA較普通
ELISA多用了兩種試劑，增加了操作步驟，在臨床檢驗中ABS-ELISA應用不多。